在過去十年里，多-能干細胞成為了多個領(lǐng)域的實用工具，幫助人們探索發(fā)育生物學(xué)、研究疾病病理和開發(fā)細胞療法。

不論你用干細胞做什么研究，都離不開低溫保存。冷凍可以保存珍貴的干細胞資源，不過冷凍干細胞可不像冷凍已分化細胞那么簡單。我們不能簡單沿用普通細胞的冷凍試劑和方案。

科學(xué)家們一開始對人胚胎干細胞進行操作時發(fā)現(xiàn)，一次凍融循環(huán)之后只有5%的細胞還具有多-能性。這是因為壓力條件會促使細胞發(fā)生分化，如果保存的干細胞發(fā)生了隨機分化，就沒有價值了。

另外，冷凍還會激活一個程序性死亡通路，而且在絕大多數(shù)情況下添加凋亡抑制劑收效甚微?？茖W(xué)家們一直在試圖理解，低溫究竟對多-能干細胞產(chǎn)生了什么影響，希望在此基礎(chǔ)上開發(fā)更好的冷凍方法，讓更多細胞存活下來。

應(yīng)該用什么來冷凍干細胞？

這個問題的答案取決于你的細胞系，不過大多數(shù)成功的冷凍方案也有一些共同點。人們一般先用蛋白酶來解離細胞，然后進行離心，最-后用含有冷凍保護劑的培養(yǎng)基重懸。經(jīng)典的冷凍保存培養(yǎng)基，由90%的胎牛血清（FBS）和10%的DMSO組成，DMSO可幫助細胞抵御冷凍帶來的有害影響。但是如果你的細胞要用于人體，上述試劑就不合適了，它們可能有毒會帶來副作用。此外，使用90 FBS/10 DMSO混合物時，細胞復(fù)蘇之后的活性往往較差。近來，研究者們紛紛開始使用無動物源成份的試劑，以及更低濃度的DMSO。Caspase抑制劑常被用來避免細胞凋亡。

今年早些時候，RIKEN發(fā)育生物學(xué)中心的Teruo Akuta等人比較了不同的低溫保存方案和試劑，為自己的胚胎干細胞和誘導(dǎo)多-能干細胞確定理想的培養(yǎng)基。他們發(fā)現(xiàn)，在冷凍前用鏈霉蛋白酶和螯和劑EDTA處理，可以提高干細胞的復(fù)蘇率。Akuta指出，干細胞喜歡抱團生長，但冷凍保護劑難以浸透較大的細胞團塊，用鏈霉蛋白酶和螯和劑EDTA可以將細胞分成大小均一的小簇。Akuta團隊還改良了商業(yè)化的低溫保護劑CP-1，CP-1含有羥yi基淀粉（植物源的冷凍保護劑）和DMSO。他們通過添加人血清白蛋白和乙二醇，進一步提高了培養(yǎng)基的效力。研究顯示，添加乙二醇時的復(fù)蘇效lv最高，有活力的細胞占到44%。不過，這樣的組合并不一定適用于任何人。

“并沒有所謂的最jia冷凍保護劑，"牛津大學(xué)的Zhanfeng Cui說。他建議新手們嘗試不同試劑，查閱用到了相同細胞系的文獻。許多人直接把細胞放在10% 的DMSO里冷凍，然后等著出現(xiàn)好結(jié)果?！盎◣讉€小時查文獻，就能為你節(jié)省大量的時間，"他指出?！芭囵B(yǎng)干細胞是個高成本又費時的過程，我們要盡可能的保護資源。"

冷凍的速度重要么？

絕大多數(shù)低溫保存方案是，先將樣本放在–80 °C冰箱過夜，第二天再轉(zhuǎn)移到液氮進行長-期儲存。有研究發(fā)現(xiàn)，使用程序性的冷凍方法能獲得更好的結(jié)果。這種方法通過特殊設(shè)備，控制樣本溫度以穩(wěn)定速度降低（每分鐘幾度）。不過就算你沒有這樣的設(shè)備也不必灰心，因為也有文章認為最終的細胞產(chǎn)量并沒有太大差異。

現(xiàn)在還出現(xiàn)了一種新興的冷凍方法，即玻璃化（vitrification）。玻璃化是指通過超快速冷卻，形成糖漿一般的液態(tài)而不是結(jié)晶的固態(tài)。這種方法能避免形成冰晶，但需要高濃度的冷凍保護劑和特殊的設(shè)備。

還是那句話，要反復(fù)嘗試才能找到最shi合自己細胞的方案，"如果你只有–80度低溫冰箱，那么就試著優(yōu)化培養(yǎng)基提高產(chǎn)量。如果有條件，控制冷卻速度和玻璃化冷凍都很值得一試。

應(yīng)該如何復(fù)蘇干細胞？

在理論上，細胞在–196 °C的液氮中可以穩(wěn)定存在很多年。激活細胞死亡和分化通路的是冷凍和復(fù)蘇過程。因此，復(fù)蘇干細胞的時機完-全取決于你自身的需要。冷凍過程需要慢而穩(wěn)，而細胞復(fù)蘇要很快。

對于細胞復(fù)蘇而言，速度是很有必要的，現(xiàn)在大家都在追求快速復(fù)蘇。

干細胞的試管可以放在37°C水浴中解凍，然后用生長培養(yǎng)基重懸。如果想除去DMSO，還可以洗幾個循環(huán)。細胞復(fù)蘇之后，最-好用幾天時間來培養(yǎng)，篩查它們的功能是否正常。

我能得到怎樣的產(chǎn)量？

如果幸-運的話（你的干細胞系特別有活力），第1次進行凍融可能會得到40%、50%甚至更高的產(chǎn)量。但是如果你的產(chǎn)量只有10%左右甚至更低，也完-全用不著驚訝。方法的優(yōu)化往往需要多次嘗試。

另外計算產(chǎn)量不要操之過急，最初的細胞活力可能有誤導(dǎo)性，細胞解凍之后有時要過一會兒才開始死亡，你可能會最終失去植板的細胞。研究顯示，細胞死亡在植板后大約24小時達到高峰，因此最-好等一等再來計算產(chǎn)量。

復(fù)蘇后的細胞還是干細胞么？

對于干細胞而言，復(fù)蘇得到活細胞并不是我們的最終目標(biāo)，關(guān)鍵問題是，這些細胞是否喪失了多-能性。除了在顯微鏡下分析形態(tài)，觀察細胞植板后的生長模式，他還建議在凍融循環(huán)前后用相應(yīng)標(biāo)記（例如Oct-4）進行染色。這樣我們就能夠了解干細胞的分化情況。在細胞復(fù)蘇后，也可以通過商業(yè)化芯片來檢測拷貝數(shù)變異、表觀遺傳學(xué)改變和染色體畸變。

復(fù)蘇的產(chǎn)量低沒什么大問題，我們只需要培養(yǎng)更多細胞就行。但是我們不能假定存活下來的細胞與原始細胞相同，特別是在產(chǎn)量很低的情況下。存活下來的細胞可能經(jīng)過了某種選擇。