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細(xì)胞培養(yǎng)常遇到的問題都在這了
點(diǎn)擊次數(shù):860 更新時(shí)間:2020-08-26

養(yǎng)細(xì)胞是一件戳心戳肺的事。你要像照顧小孩一樣仔細(xì)對(duì)待,愛護(hù)她,呵護(hù)她。上篇提到細(xì)胞培養(yǎng)的注意事項(xiàng),反響熱烈,這次就來講講細(xì)胞培養(yǎng)常見問題的原因及對(duì)策。

1. 培養(yǎng)液 pH 值變化太快

原因:

CO2  張力不對(duì)

培養(yǎng)瓶蓋擰得太緊

NaHCO3  緩沖系統(tǒng)緩沖力不足

培養(yǎng)液中鹽濃度不正確

細(xì)菌、酵母或真菌污染

對(duì)策:

按培養(yǎng)液中 NaHCO3  濃度增加或減少培養(yǎng)箱內(nèi) CO2  濃度,2.0 g/L 到 3.7 g/L 濃度 NaHCO3  對(duì)應(yīng) CO2  濃度為 5% 到 10%?;蛘吒挠貌灰蕾?CO2  培養(yǎng)液松開瓶蓋 1/4 圈加 HEPES 緩沖液至 10 到 25 mM 終濃度在 CO2  培養(yǎng)環(huán)境中改用基于 Earle’s 鹽配制的培養(yǎng)液,在大氣培養(yǎng)環(huán)境中培養(yǎng)改用 Hank’s 鹽配制的培養(yǎng)液丟棄培養(yǎng)物或用抗生素除菌

2. 培養(yǎng)液出現(xiàn)沉淀,pH 值不變

原因:

用洗滌劑清洗后殘留磷酸鹽將培養(yǎng)基成分沉淀下來冰凍保存培養(yǎng)液

對(duì)策:

用去離子水反復(fù)沖洗玻璃器皿,然后除菌將培養(yǎng)液加熱到 37 ℃,搖動(dòng)使其溶解如沉淀仍然存在,丟棄培養(yǎng)液

3. 培養(yǎng)液出現(xiàn)沉淀,同時(shí) pH 發(fā)生變化

原因:

細(xì)菌或真菌污染

對(duì)策:

丟棄培養(yǎng)物或用抗生素除菌

4. 培養(yǎng)細(xì)胞不貼壁

原因:

胰蛋白酶消化過度支原體污染培養(yǎng)液中無貼壁因子

對(duì)策:

縮短胰蛋白酶消化時(shí)間或降低胰蛋白酶濃度分離培養(yǎng)物,檢測支原體。清潔支架和培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染,丟棄培養(yǎng)物改變培養(yǎng)液成分

5. 懸浮細(xì)胞成簇

原因:

培養(yǎng)液中含鈣、鎂離子支原體污染蛋白酶過度消化使得細(xì)胞裂解釋放 DNA

對(duì)策:

用無鈣鎂平衡鹽溶液洗滌細(xì)胞,輕輕吹吸細(xì)胞獲得單細(xì)胞懸液分離培養(yǎng)物,檢測支原體。如發(fā)現(xiàn)支原體污染,丟棄培養(yǎng)物用 DNase I 處理細(xì)胞

6. 原代細(xì)胞培養(yǎng)物污染

原因:

原代培養(yǎng)組織在進(jìn)入培養(yǎng)前已污染

對(duì)策:

培養(yǎng)前用含高濃度抗生素的平衡鹽溶液反復(fù)沖洗組織培養(yǎng)前用含高濃度抗生素的平衡鹽溶液反復(fù)沖洗組織

7. 培養(yǎng)細(xì)胞死亡

原因:

培養(yǎng)箱內(nèi)無 CO2

培養(yǎng)箱內(nèi)溫度波動(dòng)太大

細(xì)胞凍存或復(fù)蘇過程中損傷

培養(yǎng)液滲透壓不正確

培養(yǎng)液種有毒代謝產(chǎn)物堆積

對(duì)策:

檢測培養(yǎng)箱內(nèi) CO2

檢查培養(yǎng)箱內(nèi)溫度

取新的保存細(xì)胞種

檢測培養(yǎng)液滲透壓。注意:大多數(shù)哺乳動(dòng)物細(xì)胞能耐受滲透壓為 260~350 mOsm/kg。加入額外試劑如 HEPES 或藥物都有可能影響培養(yǎng)液滲透壓。

換入新鮮培養(yǎng)液

8. 培養(yǎng)細(xì)胞生長減慢

原因:

由于更換不同培養(yǎng)液或血清培養(yǎng)液中一些細(xì)胞生長必需成分如谷氨酰胺或生長因子耗盡或缺乏或已被破壞培養(yǎng)物中有少量細(xì)菌或真菌污染試劑保存不當(dāng)接種細(xì)胞起始濃度太低,細(xì)胞已老化支原體污染

對(duì)策:

比較新培養(yǎng)液與原培養(yǎng)液成分,比較新血清與舊血清支持細(xì)胞生長實(shí)驗(yàn)。讓細(xì)胞逐漸適應(yīng)新培養(yǎng)液換入新鮮配制培養(yǎng)液。補(bǔ)加谷氨酰胺或生長因子

用無抗生素培養(yǎng)液培養(yǎng),如發(fā)現(xiàn)污染,丟棄培養(yǎng)物?;蛴每股爻逍璞4嬖?-5 ℃ 到 -20 ℃。培養(yǎng)液需在 2~8 ℃ 避光保存。含血清*培養(yǎng)液在 2~8 ℃ 保存,并在 2 周內(nèi)用完增加接種細(xì)胞起始濃度,換用新的保種細(xì)胞分離培養(yǎng)物,檢測支原體。清潔支架和培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染,丟棄培養(yǎng)物

9. 保存血清-好的方法?

建議血清應(yīng)保存在 -5 ℃ 至 -2O ℃。然而,若存放于 4 ℃ 時(shí),請(qǐng)勿超過一個(gè)月。若您一次無法用完一瓶,建議您無菌分裝血清至恰當(dāng)?shù)臏缇萜鲀?nèi),再放回冷凍。

10. 如何解凍血清不會(huì)使其質(zhì)量受損?

建議將血清從冷凍箱取出后,先置于 2~8 ℃ 冰箱使之融解,然后在室溫下使之全融。但必須注意的是,融解過程中必須規(guī)則地?fù)u晃均勻。

11. 血清解凍后有絮狀沉淀物怎么辦?

血清中沉淀物的出現(xiàn)有許多種原因,但-普遍的原因是由于血清中脂蛋白的變性所造成,而血纖維蛋白(形成凝血的蛋白之一)在血清解凍后,也會(huì)存在于血清中,亦是造成沉淀物的主要原因之一。

但這些絮狀沉淀物,并不影響血清本身的質(zhì)量。若欲去除這些絮狀沉淀物,可以將血清分裝至無菌離心管內(nèi),以 400 g 稍微離心,上清液即可接著加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾。我們不建議您以過濾的方法去除這些絮狀沉淀物,因?yàn)樗赡軙?huì)阻塞您的過濾膜。

12. 為什么要熱滅活血清?

加熱可以滅活補(bǔ)體系統(tǒng)。激活的補(bǔ)體參與溶解細(xì)胞事件,刺激平滑肌收縮,細(xì)胞和血小板釋放組胺,激活淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。在免疫學(xué)研究,培養(yǎng) ES 細(xì)胞,昆蟲細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞時(shí),推薦使用熱滅活血清。

13. 有必要做熱滅活嗎?

實(shí)驗(yàn)顯示,經(jīng)過正確處理的熱滅活血清,對(duì)大多數(shù)的細(xì)胞而言是不需要的。經(jīng)此處理過的血清對(duì)細(xì)胞的生長只有微小的促進(jìn),或*沒有任何作用,甚至通常因?yàn)楦邷靥幚碛绊懥搜宓馁|(zhì)量,而造成細(xì)胞生長速率的降低。

而經(jīng)過熱處理的血清,沉淀物的形成會(huì)顯著的增多,這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察,像是「小黑點(diǎn)」,常常會(huì)讓研究者誤以為是血清遭受污染,而把血清放在 37 ℃ 環(huán)境中,又會(huì)使此沉淀物更增多,使研究者誤認(rèn)為是微生物的分裂擴(kuò)增。

14. 儲(chǔ)存冰箱中的胎牛血清出現(xiàn)沉淀?

GIBICO 的胎牛血清沒有預(yù)老化,儲(chǔ)存在 2~8 ℃ 時(shí),血清中的各種蛋白和脂蛋白(如冷凝集素、纖維蛋白原、玻粘連蛋白等)可能聚集而形成沉淀或可見的混濁。這應(yīng)該不會(huì)影響血清的質(zhì)量。推薦在 -20 ℃ 儲(chǔ)存胎牛血清,避免反復(fù)凍融。

15. 如何避免沉淀物的產(chǎn)生?

解凍血清時(shí),請(qǐng)按照所建議的逐步解凍法(-20 ℃ 至 4 ℃ 至室溫),若血清解凍時(shí)改變的溫度太大(如 -20 ℃ 至 37 ℃),實(shí)驗(yàn)顯示非常容易產(chǎn)生沉淀物。

解凍血清時(shí),請(qǐng)隨時(shí)將之搖晃均勻,使溫度及成分均一,減少沉淀的發(fā)生。

請(qǐng)勿將血清置于 37 ℃ 太久。若在 37 ℃ 放置太久,血清會(huì)變得混濁,同時(shí)血清中許多較不穩(wěn)定的成分也會(huì)因此受到損害,而影響血清的質(zhì)量。

血清的熱滅活非常容易造成沉淀物的增多,若非必要,可以無須做此步驟。若必須做血清的熱滅活,請(qǐng)遵守 56 ℃,30 分鐘的原則,并且隨時(shí)搖晃均勻。溫度過高,時(shí)間過久或搖晃不均勻,都會(huì)造成沉淀物的增多。

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