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細(xì)胞培養(yǎng)的具體操作步驟分析
點(diǎn)擊次數(shù):1076 更新時(shí)間:2021-05-10

細(xì)胞培養(yǎng)這個(gè)生物學(xué)研究蕞基礎(chǔ)的技術(shù)之一,已經(jīng)滲透進(jìn)了科研工作的方方面面。本文將與大家分享細(xì)胞培養(yǎng)經(jīng)驗(yàn)的總結(jié),涵蓋了昆蟲細(xì)胞蛋白表達(dá)常用到的sf9細(xì)胞與哺乳動(dòng)物細(xì)胞蛋白表達(dá)系統(tǒng)的CHO細(xì)胞與HEK293細(xì)胞,主要介紹了細(xì)胞復(fù)蘇、細(xì)胞傳代、細(xì)胞凍存的具體操作方法。

 

 

細(xì)胞復(fù)蘇:
1、細(xì)胞培養(yǎng)條件
2、復(fù)蘇流程:
(1)確認(rèn)水浴鍋的水清潔可用,方可提前打開37度預(yù)熱。
(2)確認(rèn)好復(fù)蘇細(xì)胞的液氮罐中具體位置,并做好復(fù)蘇登記。
(3)提前做好復(fù)蘇準(zhǔn)備,預(yù)熱培養(yǎng)基。
(4)懸浮和貼壁細(xì)胞復(fù)蘇參數(shù):
(5)將細(xì)胞快速放入37度水浴鍋中迅速溶解,1.8 ml時(shí)間大概1分30秒,1 ml大概1 min左右,需計(jì)時(shí),期間不要老是拿起來觀察,需要快速復(fù)溶,避免細(xì)胞受到損傷。
(6) 貼壁細(xì)胞需離心, 1000 rpm,5 min;懸浮細(xì)胞直接加入預(yù)熱的培養(yǎng)基中然后放入培養(yǎng)箱中
(7)貼壁細(xì)胞離心后去除上清,用預(yù)熱的培養(yǎng)基重懸細(xì)胞后加入到T25方瓶,蕞后放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
(8)取小樣計(jì)數(shù)觀察,細(xì)胞活力在70%以上算正常。低于70%活力可能細(xì)胞狀態(tài)不太好,需要培養(yǎng)和恢復(fù)。

細(xì)胞傳代培養(yǎng)
1. 懸浮細(xì)胞傳代流程:
(1) 先將裝有細(xì)胞的搖瓶從培養(yǎng)箱拿出,用酒精噴灑瓶身后將搖瓶拿進(jìn)超凈臺(tái);
(2) 打開搖瓶瓶蓋,用200 ul移液器取100~200 ul細(xì)胞放入1.5 mlEP管中,瓶蓋過火,擰緊,將培養(yǎng)瓶放回?fù)u床;
(3)將200 ul細(xì)胞混勻,取10 ul細(xì)胞加入10 ul臺(tái)盼藍(lán),顯微鏡下計(jì)數(shù)。根據(jù)細(xì)胞數(shù)決定下游實(shí)驗(yàn);
(4)細(xì)胞需計(jì)數(shù)兩次求平均值;
(5)懸浮細(xì)胞生長參數(shù)
(6)根據(jù)不同細(xì)胞的生長曲線在合適的時(shí)間和密度給細(xì)胞接種傳代;

以sf9細(xì)胞為例:
細(xì)胞接種密度0.4 x10^6個(gè)/ml,24 h密度1x10^6個(gè)/ml,48 h密度2.4x10^6個(gè)/ml,72 h密度6x10^6個(gè)/ml,此時(shí)需要傳代細(xì)胞;要求留樣100 ml0.4 x10^6個(gè)/ml具體操作如下:
計(jì)算:需要母細(xì)胞體積=100*0.4/6=6.6ml
需要培養(yǎng)基體積=100-6.6=93.4ml
將上面體積的細(xì)胞和培養(yǎng)基加入到搖瓶中,放回27度培養(yǎng)箱培養(yǎng)即可

2. 貼壁細(xì)胞傳代流程:
(1) 顯微鏡下觀察細(xì)胞狀態(tài)和密度,80%匯合率以上需要傳代;
(2) T25方瓶中加入0.5 ml~1 ml 0.25%胰酶溶液(需37度預(yù)熱),使瓶底細(xì)胞都浸入溶液中。放入37度培養(yǎng)箱進(jìn)行消化;
(3) 不同細(xì)胞消化時(shí)間不一樣,初次培養(yǎng)貼壁細(xì)胞消化時(shí)間可以定在1min,顯微鏡下觀察消化結(jié)果,消化不*可以再適度加長消化時(shí)間;
(4)對(duì)于有經(jīng)驗(yàn)的細(xì)胞消化可以定個(gè)準(zhǔn)確的時(shí)間,消化結(jié)束后將培養(yǎng)皿放入顯微鏡下觀察細(xì)胞,隨著時(shí)間變長,原先貼壁細(xì)胞逐漸變圓,慢慢脫落,在還未飄起時(shí)棄掉胰酶,加入含有10%FBS的新鮮培養(yǎng)基終止消化;
(5) 用1 ml移液器輕輕吹打細(xì)胞,將細(xì)胞全部吹下后,可進(jìn)行傳代,一般是1:3傳代;
(6) 貼壁不牢的細(xì)胞可以用0.1%的凝膠包被4℃ 30min,用PBS清洗5次。

細(xì)胞凍存
1、細(xì)胞凍存參數(shù)

2、貼壁細(xì)胞凍存流程:
(1)將胰酶、培養(yǎng)基提前37度預(yù)熱;凍存液提前配好放到4度冰箱預(yù)冷;
(2)先將裝有細(xì)胞的方瓶從培養(yǎng)箱拿出,用酒精噴灑瓶身后將搖瓶拿進(jìn)超凈臺(tái);
(3) 打開方瓶瓶蓋,將方瓶中的培養(yǎng)基倒干凈;
(4) 根據(jù)細(xì)胞消化難易程度添加適量的胰酶;T25方瓶加1 ml胰酶,T75方瓶加2ml胰酶;
(5) 根據(jù)細(xì)胞消化難易程度放入37度培養(yǎng)箱消化1-5 min,知道看見大片的細(xì)胞開始脫落,要及時(shí)終止消化;
(6) 終止培養(yǎng)基需要含有至少10%血清,通常終止比例為1:10(1ml胰酶需要加入10 ml終止培養(yǎng)基),對(duì)胰酶比較敏感的細(xì)胞需要終止后離心后換新鮮的培養(yǎng)基;
(7) 終止后將細(xì)胞輕輕吹打混勻,避免結(jié)團(tuán),細(xì)胞收集到15 ml或者50 ml離心管中,將離心管配平,放入離心機(jī)中1000 rmp5分鐘;
(8) 將離心管從離心機(jī)中取出,用酒精噴灑后拿進(jìn)超凈臺(tái);
(9) 棄掉離心管中上清,加入預(yù)冷的凍存液,吹打混勻;
(10) 將混勻的細(xì)胞加入凍存管中;
(11)將凍存管放入凍存盒中,蕞后放入-80°冰箱;
(12) 第二天把細(xì)胞轉(zhuǎn)移至液氮;

3、懸浮細(xì)胞凍存流程:
(1) 先將裝有細(xì)胞的搖瓶從培養(yǎng)箱拿出,用酒精噴灑瓶身后將搖瓶拿進(jìn)超凈臺(tái);
(2) 打開搖瓶瓶蓋,取適量細(xì)胞放入50 ml離心管或15 ml離心管中;
(3) 將離心管配平,放入離心機(jī)中1000 rmp5分鐘;
(4) 將離心管從離心機(jī)中取出,用酒精噴灑后拿進(jìn)超凈臺(tái);
(5) 棄掉離心管中上清,加入提前預(yù)冷的凍存液,吹打混勻;
(6) 將混勻的細(xì)胞加入凍存管中;
(7) 將凍存管放入凍存盒中,蕞后放入-80°冰箱;
(8) 第二天把細(xì)胞轉(zhuǎn)移至液氮;

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